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从医疗废物到细胞资源库——关于胎盘间充质干细胞优势的文献汇总

从医疗废物到细胞资源库——关于胎盘间充质干细胞优势的文献汇总

来源:博雅

日期: 2026.10.22

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本文重点摘要



从被丢弃的医疗废物,

到再生医学的资源库,

胎盘与脐带的价值正在被重新认识。


《Advanced Therapeutics》综述梳理其六项优势:

非侵入获取、

分化潜能更广、

免疫调节强而免疫原性低、

具备归巢能力、

有肿瘤抑制潜力、

可产后冻存。


临床数据也在不断积累。

这份来自新生的"生命礼物",

值得以科学、理性的方式看待。


骨髓是最早进入临床研究的间充质干细胞来源,

也是约束最明显的一个。

获取需要穿刺,有创,伴随疼痛。


更关键的是,

骨髓来源间充质干细胞(BM-M)的产量与质量,

随供体年龄增长而显著下滑。

供体自身的疾病状态与遗传背景,

也会对细胞质量产生不良影响。

这限制了自体回输在老年人群与慢病人群中的可行性。


胚胎干细胞(ESCs)走的是另一条路。

分化能力强,

但围绕胚胎破坏的伦理争议持续未解。


胎盘提供了一个折中选项。

足月胎盘在胎儿娩出后即被排出体外,

常规处置方式是作为医疗废物。

从这一组织中分离间充质干细胞,

无需额外手术,

对母亲与新生儿不构成任何附加创伤,

也不涉及胚胎破坏。

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2022年发表于《Advanced Therapeutics》的一篇综述指出[10]:

从胎盘不同部位分离的间充质干细胞,

被认为是一种丰富、可供异体使用且可持续获取的间充质干细胞来源。


在生物学特性上,

它处于BM-MSCs与ESCs之间——

规避了后者的伦理负担,

又在多项指标上优于前者。

产后即可冻存,用于未来的自体或异体治疗。

这是它区别于其他来源的一项关键操作优势。


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图1 人胎盘中各种来源的间充质干细胞的示意图 [1]。


胎盘间充质干细胞的六大优势


《Advanced Therapeutics》综述文章《Placenta-Derived Mesenchymal Stem Cells for Treatment of Diseases: A Clinically Relevant Source》系统讨论了胎盘来源间充质干细胞的临床前和临床应用证据。


文献总结的优势,集中在六个方面。


第一,获取方式非侵入。

胎盘在分娩后从已分离的胎盘组织中提取。

不涉及胚胎破坏。

不存在胚胎干细胞那样的伦理障碍。

骨髓间充质干细胞需要穿刺获取,有创,也伴随痛苦。


第二,分化潜能较广。

胎盘间充质干细胞可分化为脂肪细胞、软骨细胞和成骨细胞。

这是间充质干细胞的经典三系分化能力。

研究还显示,

它具有分化为多种神经细胞谱系和心肌细胞的能力。

这为神经系统疾病和心血管疾病的细胞治疗提供了候选来源。


第三,免疫调节能力强,免疫原性低。

胎盘是母胎界面的免疫“特区”。

胎盘间充质干细胞低表达MHC-I类分子,

几乎不表达MHC-II类分子。

异体使用时,严重免疫排斥风险相对较低。


第四,具有归巢能力。

进入体内后,可向损伤组织或肿瘤微环境定向迁移。

不是随机分布。

而是主动趋向需要修复或干预的部位。

这是精准细胞治疗的重要生物学基础。


第五,具有肿瘤抑制潜力。

多种肿瘤模型显示,

胎盘间充质干细胞具有抗癌效果。

机制涉及抑制肿瘤血管生成,

诱导肿瘤细胞凋亡,

调节肿瘤微环境免疫状态等通路。



第六,可出生后采集冻存。

分娩后立即采集、分离并冷冻保存。

建立个人或家庭的细胞资源。

文献提出,可为未来潜在治疗保留资源。

实际存储年限取决于存储工艺、质量体系等。


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图3 PMSCs主要特征的示意图,这些特征有助于其临床应用[10]。


其他文献证实:胎盘脐带干细胞优势更大

近年来,

多项科学研究表明:

围产组织来源间充质干细胞具有显著优势[1-2]。


(1)围产组织间充质干细胞(胎盘/脐带),

数量与增殖速度上潜力更大。

有助于突破传统干细胞来源不足的瓶颈。


胎盘和脐带是分娩后的自然产物。

获取过程无创,无伦理争议。

细胞处于较年轻、较原始的生物学状态。

这类“新生儿级”干细胞增殖活力较强。


研究表明,

骨髓干细胞的数量和质量会随供体年龄增长而下降。

中老年患者的细胞活性常明显不足[3]。


一项体外研究[4]比较了多种来源间充质干细胞的体外增殖能力。

结果显示:

围产组织间充质干细胞(UC-MSCs)衰老速度较慢。

其细胞增殖速率高于BM-MSCs。


这一来源优势,

有助于在临床应用中更快获得足够治疗数量的细胞。

也为“现货型细胞药物”开发提供基础。


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图片来自文献[4]


(2)胎盘/脐带来源间充质干细胞,

在免疫调节和免疫抑制特性上表现更突出。


在免疫调节能力比较中,

围产组织间充质干细胞显示多维优势。

围产组织来源间充质干细胞免疫调节和免疫抑制特性较突出。

可调节免疫反应,减轻炎症反应。


一项研究证实[4]:

在同种异体淋巴细胞刺激测定后,

围产组织来源间充质干细胞的免疫原性低于骨髓来源间充质干细胞。

淋巴细胞增殖水平也较低。


此外,围产组织来源间充质干细胞整体免疫调节作用更强。

其强效免疫抑制因子CD-200、LIF和TGF-β2的表达增加。


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图片来自文献[5]


围产组织来源间充质干细胞缺乏或低表达人白细胞抗原I类。

因此,其免疫原性低于BM-MSCs。

这一特性有助于抑制自身免疫性疾病的发展。

也使此类细胞在多种免疫相关疾病治疗中显示出较大潜力。


冷冻存储的围产组织间充质干细胞在临床上的应用案例


近年来,

多项临床研究报道了冷冻存储的围产组织间充质干细胞的应用。

涉及骨关节炎、心脑血管等健康问题。

研究报告了良好临床结局。


一项系统综述[6]评估了冷冻保存的MSCs在心血管疾病中的疗效与安全性。

共纳入7项研究。

包括3项UC-MSCs研究和4项BM-MSCs研究。


汇总分析显示:

短期随访期间,

低温MSCs组左心室射血分数(LVEF)显著改善2.11%。

与BM-MSCs相比,

UC-MSCs效果更佳。

LVEF改善幅度达3.53%。


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在骨关节修复领域,

国外开展了一项人胎盘间充质干细胞(hP-MSCs)治疗膝骨关节炎(KOA)的研究[7]。


该研究纳入26名II-III期KOA患者。

分为对照组和MSCs组。

对照组11例,仅接受透明质酸(HA)治疗。MSCs组15例,接受人胎盘间充质干细胞联合HA治疗。


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图片来自文献7


结果表明:

人胎盘间充质干细胞治疗是安全的。

与对照组相比,

人胎盘间充质干细胞组在治疗半年和1年后,

WOMAC和VAS评分显著降低。

提示功能障碍及疼痛等症状得到明显改善。


此外,治疗6个月后,

人胎盘间充质干细胞组血清IL-2水平显著降低。

提示人胎盘间充质干细胞具有抗炎特性。


小结

从被丢弃的医疗废弃物,

到再生医学的重要资源,

脐带、胎盘组织的价值正在被重新认识。


胎盘脐带来源间充质干细胞,

具备无创取材、增殖潜力较高、免疫原性较低、修复作用多效等特点。

在骨关节病、心衰、肺纤维化、慢性疼痛等领域,

相关临床数据持续积累。


对家庭而言,

存储脐带、胎盘干细胞,

是提前保留一份细胞资源。


对行业而言,

深挖这类生物废料潜力,

有助于再生医学低成本、可持续发展。


随着质控标准完善、临床试验推进,

这类细胞有望在更多疾病领域发挥作用。

这份来自新生的“生命礼物”,

值得以科学、理性的方式看待。



本期撰文:Dr韦

本文审核专家:江苏大学附属医院 李晶教授


参考文献:

[1] Barlow S, Brooke G, Chatterjee K, et al. Comparison of human placenta- and bone marrow-derived multipotent mesenchymal stem cells. Stem Cells Dev. 2008;17(6):1095-1107. doi:10.1089/scd.2007.0154

[2] Chia WK, Cheah FC, Abdul Aziz NH, et al. A Review of Placenta and Umbilical Cord-Derived Stem Cells and the Immunomodulatory Basis of Their Therapeutic Potential in Bronchopulmonary Dysplasia. Front Pediatr. 2021;9:615508. Published 2021 Mar 9. doi:10.3389/fped.2021.615508

[3] Ganguly P, El-Jawhari JJ, Burska AN, Ponchel F, Giannoudis PV, Jones EA. The Analysis of In Vivo Aging in Human Bone Marrow Mesenchymal Stromal Cells Using Colony-Forming Unit-Fibroblast Assay and the CD45lowCD271+ Phenotype. Stem Cells Int. 2019 Aug 1;2019:5197983. doi: 10.1155/2019/5197983. PMID: 31467563; PMCID: PMC6701348.

[4] Jin HJ, Bae YK, Kim M, Kwon SJ, Jeon HB, Choi SJ, Kim SW, Yang YS, Oh W, Chang JW. Comparative analysis of human mesenchymal stem cells from bone marrow, adipose tissue, and umbilical cord blood as sources of cell therapy. Int J Mol Sci. 2013 Sep 3;14(9):17986-8001. doi: 10.3390/ijms140917986. PMID: 24005862; PMCID: PMC3794764.

[5] Shokati A, Naser Moghadasi A, Nikbakht M, Sahraian MA, Mousavi SA, Ai J. A focus on allogeneic mesenchymal stromal cells as a versatile therapeutic tool for treating multiple sclerosis. Stem Cell Res Ther. 2021;12(1):400. Published 2021 Jul 13. doi:10.1186/s13287-021-02477-5

[6] Safwan M, Bourgleh MS, Haider KH. Clinical experience with cryopreserved mesenchymal stem cells for cardiovascular applications: A systematic review. World J Stem Cells. 2025;17(3):102067. doi:10.4252/wjsc.v17.i3.102067

[7] Holiuk Y, Birsa R, Bukreieva T, et al. Effectiveness and safety of multiple injections of human placenta-derived MSCs for knee osteoarthritis: a nonrandomized phase I trial. BMC Musculoskelet Disord. 2025;26(1):418. Published 2025 Apr 26. doi:10.1186/s12891-025-08664-2

[8]Moonshi S S, Adelnia H, Wu Y, et al. Placenta‐Derived Mesenchymal Stem Cells for Treatment of Diseases: A Clinically Relevant Source[J]. Advanced Therapeutics, 2022, 5(10): 2200054.

[9] Timmins NE, Kiel M, Günther M, Heazlewood C, Doran MR, Brooke G, Atkinson K. Closed system isolation and scalable expansion of human placental mesenchymal stem cells. Biotechnol Bioeng. 2012 Jul;109(7):1817-26. doi: 10.1002/bit.24425. Epub 2012 Jan 17. PMID: 22249999.

[10]Moonshi, S. S., Adelnia, H., Wu, Y. & Ta, H. T. Placenta-Derived Mesenchymal Stem Cells for Treatment of Diseases: A Clinically Relevant Source. Advanced Therapeutics 5, 2200054 (2022).



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